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蛍光生体内映像機器

just as it is . . .
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Applications

Tumor Imaging

GFP安定細胞株は腫瘍化を確認するために使用できます。作成されたGFP安定細胞株は、FOBIを使用してインビトロでイメージングできます。 GFP細胞は、細胞増殖として皮下組織および蛍光画像に注入されます。このようにして、腫瘍サイズの定量化と比較に加えて、他の組織への転移の画像を得ることができます。
時間の経過とともに、蛍光の信号強度が変化し、それに応じてカメラの露光時間が変化する可能性があります。 NEOimage分析プログラムは、露出時間やゲインなどのさまざまな条件を考慮することにより、この変化を定量化できます。画像の異なるサンプルの結果を比較して分析することもできます。

Cell Tracking

さまざまな目的で機能が強化された幹細胞または免疫細胞を動物内で画像化して、それらの位置と生存率を確認できます。幹細胞と免疫細胞は、蛍光遺伝子で標識することが困難です。したがって、細胞はさまざまな方法で蛍光試薬で染色できます。
蛍光試薬で染色された幹細胞と免疫細胞は、静脈内注射、腹腔内注射、皮下注射などのさまざまな方法を使用して動物に入れることができます。これらの細胞は、FOBIイメージングを使用して配置できます。定量分析を使用して細胞生存を決定することができます。

Plant

FOBIはGFPラベルの付いた植物の葉を画像化できます。植物の葉は、クロロフィルの強い自家蛍光のために画像を取得することが困難です。クロロフィルの自家蛍光は除去でき、特定のフィルターを使用してGFPで分析できます。
クロロフィル自体の自家蛍光もデータとして使用できます。クロロフィルの活性度は自家蛍光の強さで確認できます。さらに、植物の種子とカルスから画像を取得できます。植物のライフサイクル全体を通じて、蛍光イメージングが可能です。

DDS(Drug Delivery System)

蛍光標識された薬物または細胞は、インビトロでの蛍光強度を決定することができます。このデータは、蛍光ラベルがIn Vivoイメージングに適しているかどうかを確認するために使用できます。これは、生体内実験の結果を予測または修正するための基礎として使用できます。このプロセスにより、実験的なエラーを防ぐことができます。場合によっては、In Vitro実験自体が重要になることがあります。

In Vitroで確認された薬物は、実験目的で動物に注射できます。一定間隔で撮影することで、動物の生体組織における薬物の動きや蓄積パターンを確認できます。
In Vivoで確認された薬剤の画像はEx Vivoで再度確認できます。動物を犠牲にした後でも蛍光が発現するため、各組織を個別に定量することが可能です。結果のEx Vivoデータは、In Vivoデータと共に、実験の優れた証拠を提供できます。

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Fig. 1. Animal imaging by FOBI

It is possible to apply most fluorescence proteins and fluorescence materials from GFP to ICG using four channels of Blue, Green, Red and NIR. Since more than one fluorescent substance can be imaged, different functions can be observed in one sample. For example, tumor imaging and drug imaging can be performed in the same animal, so targeting and tumorization can be observed simultaneously. You can also merge bright images in order to localization the fluorescence within the animal.

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Fig. 2. Fluorescence imaging of various materials and methods

a. Fluorescence labeled chemicals in the Zebrafish. b. GFP cell in the 24well plate. c. Fluorescence labeling test. d. Ex Vivo imaging for drug delivery system. e. GFP expression leaf infected gene by virus vehicle. f. Auto-fluorescence from the chlorophyll. g. Gene expression on the leaf with marker gene. h. Gene transfected seed seperated by GFP imaging.

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